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内毒素水平:< 0.5 EU/ml。
解读:这个水平足以满足常规的细胞分离、流式细胞术检测、细胞增殖实验等需求。但如果是极度敏感的原代细胞培养或某些特定的细胞因子释放实验,可能需要更低内毒素(如 <0.12 EU 或 <0.06 EU)的医用级或高级别产品。
密度:1.077 ± 0.001 g/mL。
解读:这是分离人淋巴细胞的标准密度。利用密度梯度离心原理,使淋巴细胞(密度较小)悬浮在分离液与血浆的界面,而红细胞和粒细胞(密度较大)沉降到管底。
渗透压:通常在 290~350 mOsm/kg 之间,pH值 7.0~7.5,以保证细胞在分离过程中的活性。
主要成分:通常由聚蔗糖(Ficoll)和泛-影酸钠(Sodium diatrizoate)配制而成。
适用样本:新鲜抗凝人外周血、脐带血。
适用实验:
免疫学基础研究(T/B/NK细胞亚群分析)。
流式细胞术样本制备。
细胞功能实验(如细胞毒性实验、细胞因子检测)。
一般的细胞培养(非临床级)。
温度控制(至关重要):
操作温度:必须在 18℃~25℃ 室温下进行。
禁忌:严禁 4℃ 冷藏保存后直接使用。低温会导致分离液密度改变并可能析出结晶,严重影响分层效果,导致红细胞污染。如果室温较低,建议提前将分离液和样本平衡至室温。
样本新鲜度:
最好使用采血 2小时内 的新鲜抗凝血(EDTA或肝素抗凝)。血液放置过久会导致细胞凋亡或粘连,降低回收率。
稀释比例:
通常建议将全血用 PBS 或生理盐水按 1:1 比例稀释后再铺在分离液上。
离心参数:
推荐条件:400~800g(约 2000-2500 rpm,视离心机半径而定),离心 20~30分钟。
关键点:离心机的刹车必须关闭(或调至低速)。如果离心结束急刹车,会破坏已经形成的细胞分层界面。
吸取技巧:
离心后,中间那层白色的云雾状薄层(白膜层)就是你要的 PBMC。吸取时尽量吸尽白膜层,但避免吸入下层的红细胞或上层过多的血浆(血小板)。
为了确保实验顺利,在选购和使用时有几个关键点值得留意:
核心参数确认:分离液的关键指标包括内毒素(Endotoxin)、无菌性(Sterility) 和密度(Density,标准为1.077±0.001 g/mL)。对于常规细胞实验,<0.5EU的级别已经足够。如果涉及对纯度要求非常高的免疫学研究或临床样本处理,可以考虑选择内毒素水平更低的<0.25EU版本。
供应商资质核实:在选择供应商时,建议核实其是否为厂家授权的一级或核心代理商,这能有效保障产品来源的正规性和售后服务的响应速度。
储存和操作规范:这是确保分离效果的关键。务必避免冷藏或冷冻,在常温(18-25℃)下保存。操作时环境温度应保持在20±2℃,并全程在无菌条件下进行。
抗凝剂的选择:分离效果和后续细胞状态也受抗凝剂影响。如果后续计划进行细胞培养(如NK、CIK细胞),推荐使用肝-素钠抗凝;如果分离出的PBMC用于其他检测,枸-橼酸钠是更佳选择